Коллекция ВИР и гербарий ВИР (WIR) для сохранения, расширения и использования генетического разнообразия винограда

Научная деятельность по совершенствованию стандартов систематизации сбора и хранения ценных образцов генетических ресурсов и информации о них имеет сегодня ключевое значение для успешного развития мирового виноградарства в свете вызовов, возникших в отрасли в связи с распространением болезней винограда и меняющимися климатическими условиями. В обзоре кратко охарактеризован мировой генофонд винограда, описаны подходы к его сохранению, в том числе к базовому и дублетному хранению, состояние и перспективы развития методов сохранения in vitro и в криоколлекциях. Дана оценка генетическому потенциалу диких родичей винограда с акцентом на значение конкретных видов в качестве источников генов устойчивости к факторам биотического и абиотического стрессов. Рассмотрены достижения в применении технологий генетического редактирования для повышения устойчивости винограда к болезням. Отмечено, что в настоящее время в этом направлении применяется преимущественно нокаут генов, обеспечивающих восприимчивость культурного винограда к болезням, тогда как в дальнейшем наибольший потенциал имеет внесение при помощи редактирования направленных изменений в гены культурного винограда на основе знаний о генах устойчивости диких родичей, что требует активного изучения последних при помощи современных методов прямой и обратной генетики. В контексте вопросов сохранения и расширения генетического разнообразия винограда на современном технологическом этапе детально проанализированы состояние и значение коллекции ВИР и гербария ВИР (WIR). Отмечена важность аутентификации образцов винограда и роли, которая отведена в свете решения этих задач гербарию винограда ВИР – уникальному собранию физических носителей эталонной генетической информации об отечественном коллекционном генофонде винограда. Обозначены перспективные направления развития гербария ВИР в связи с созданием и хранением в нем номенклатурных стандартов отечественных сортов.

1. Abdullahi I., Rott M. Microarray immunoassay for the detection of grapevine and tree fruit viruses. Journal of Virological Methods. 2009;160(1-2):90-100. DOI: 10.1016/j.jviromet.2009.04.027

2. Agrawal A., Singh S., Vaidya Malhotra E., Meena D.P.S., Tyagi R. In vitro conservation and cryopreservation of clonally propagated horticultural species. In: P.E. Rajasekharan, V. Ramanatha Rao (eds). Conservation and Utilization of Horticultural Genetic Resources. Singapore: Springer; 2019. p.529-578. DOI: 10.1007/978-981-13-3669-0_18

3. Alleweldt G., Possingham J.V. Progress in grapevine breeding. Theoretical and Applied Genetics. 1988;75:669-673. DOI: 10.1007/BF00265585

4. Ампелография СССР. Отечественные сорта винограда. Москва; 1984.

5. Айба Л.Я. У истоков субтропического растениеводства в Абхазии. Субтропическое и декоративное садоводство. 2019;(70):9-16. DOI: 10.31360/2225-3068-2019-70-9-16

6. Barlass M., Skene K.G.M. Studies on the fragmented shoot apex of grapevine: II. Factors affecting growth and differentiation in vitro. Journal of Experimental Botany. 1980;31(2):489-495. DOI: 10.1093/jxb/31.2.489

7. Беспалова Е.С., Ухатова Ю.В., Волкова Н.Н., Овэс Е.В., Гаитова Н.А., Гавриленко Т.А. Изучение посткриогенного регенерационного потенциала сортов картофеля в разных условиях культивирования. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2019;23(3):281-286. DOI: 10.18699/VJ19.500

8. Bettoni J.C., Kretzschmar A.A., Bonnart R., Shepherd A., Volk G.M. Cryopreservation of 12 Vitis species using apical shoot tips derived from plants grown in vitro. HortScience. 2019;54(6):976-981. DOI: 10.21273/HORTSCI13958

9. Bettoni J.C., Marković Z., Bi W., Volk G.M., Matsumoto T., Wang Q.C. Grapevine shoot tip cryopreservation and cryotherapy: secure storage of disease-free plants. Plants. 2021;10(10):2190. DOI: 10.3390/plants10102190

10. Bi W.L., Hao X.Y., Cui Z.H., Volk G.M., Wang Q.C. Droplet-vitrification cryopreservation of in vitro-grown shoot tips of grapevine (Vitis spp.). In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 2018;54(6):590-599. DOI: 10.1007/s11627-018-9931-0

11. Blakesley D., Pask N., Henshaw G.G., Fay M.F. Biotechnology and the conservation of forest genetic resources: in vitro strategies and cryopreservation. Plant Growth Regulation. 1996;20(1):11-16. DOI: 10.1007/BF00024051

12. Blasi P., Blanc S., Wiedemann-Merdinoglu S., Prado E., Rühl E.H., Mestre P. et al. Construction of a reference linkage map of Vitis amurensis and genetic mapping of Rpv8, a locus conferring resistance to grapevine downy mildew. Theoretical and Applied Genetics. 2011;123(1):43-53. DOI: 10.1007/s00122-011-1565-0

13. Boso S., Alonso-Villaverde V., Gago P., Santiago J.L., Martínez M.C. Susceptibility of 44 grapevine (Vitis vinifera L.) varieties to downy mildew in the field. Australian Journal of Grape and Wine Research. 2011;17(3):394-400. DOI: 10.1111/j.1755-0238.2011.00157.x

14. Boso S., Kassemeyer H.H. Different susceptibility of European grapevine cultivars for downy mildew. VITIS – Journal of Grapevine Research. 2008;47(1):39-49. DOI: 10.5073/vitis.2008.47.39-49

15. Boso S., Martínez M.C., Unger S., Kassemeyer H.H. Evaluation of foliar resistance to downy mildew in different cv. Albariño clones. VITIS – Journal of Grapevine Research. 2006;45(1):23-27. DOI: 10.5073/vitis.2006.45.23-27

16. Cadle-Davidson L. Variation within and between Vitis spp. for foliar resistance to the downy mildew pathogen Plasmopara viticola. Plant Disease. 2008;92(11):1577-1584. DOI: 10.1094/PDIS-92-11-1577

17. Центральный сибирский ботанический сад СО РАН. Гербарий высших растений, лишайников и грибов: [сайт]. URL: https://csbg-nsk.ru/unu_herbarium [дата обращения: 22.06.2023].

18. Чамагуа Е.И. Виноград Абхазии. Сухуми: Алашара; 1968.

19. Чухина И.Г., Мифтахова С.Р., Дорофеев В.И. Международный кодекс номенклатуры культурных растений: к истории Русскоязычного перевода. Vavilovia. 2021;4(1):48-54. DOI: 10.30901/2658-3860-2021-1-48-54

20. Cruz-Cruz C.A., González-Arnao M.T., Engelmann F. Biotechnology and conservation of plant biodiversity. Resources. 2013;2(2):73-95. DOI: 10.3390/resources2020073

21. Dalla Costa L., Malnoy M., Lecourieux D. Deluc L., OuakedLecourieux F., Thomas M.R. et al. The state-of-the-art of grapevine biotechnology and new breeding technologies (NBTS). OENO One. 2019;53(2):189-212. DOI: 10.20870/oeno-one.2019.53.2.2405

22. Дунаева С.Е., Пендинен Г.И., Антонова О.Ю., Швачко Н.А., Ухатова Ю.В., Шувалова Л.Е., Волкова Н.Н., Гавриленко Т.А. Сохранение вегетативно размножаемых культур в in-vitro- и криоколлекциях: методические указания / под ред. Т.А. Гавриленко. 2-е изд. Санкт-Петербург: ВИР; 2017.

23. Engelmann F. In vitro conservation methods. In: J.A. Callow, B.V. Ford Lloyd, H.J. Newbury (eds). Biotechnology and Plant Genetic Resources. Oxford: CABI; 1997. р.119-162.

24. Engelmann F. Use of biotechnologies for the conservation of plant biodiversity. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 2011;47(1):5-16. DOI: 10.1007/s11627-010-9327-2

25. FAOSTAT. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Food and agriculture data. Rome: FAO; 2022. Available from: http://www.fao.org/faostat/en/#data [accessed June. 22, 2023].

26. Гавриленко Т.А., Чухина И.Г. Номенклатурные стандарты современных российских сортов картофеля, хранящиеся в гербарии ВИР (WIR): новые подходы к регистрации сортового генофонда в генбанках. Биотехнология и селекция растений. 2020;3(3):6-17. DOI: 10.30901/2658-6266-2020-3-o2

27. Gisbert C., Peiró R., Pedro T.S., Olmos A., Jiménez C., García J. Recovering ancient grapevine varieties: from genetic variability to in vitro conservation, a case study. In: A.M. Jordão, F. Cosme (eds). Grapes and Wines – Advances in Production, Processing, Analysis and Valorization. London: IntechOpen; 2018. p.3-21. DOI: 10.5772/intechopen.71133

28. Hassan N.A., Gomma A.H., Shahin M.A., El Homosany A.A. In vitro storage and cryopreservation of some grape varieties. Journal of Horticultural Science and Ornamental Plants. 2013;5(3):183-193. DOI: 10.5829/idosi.jhsop.2013.5.3.1126

29. Hassanen S.A., Abido A.I.A., Aly M.A.M., Rayan G.A. In vitro preservation of grapevine (Vitis vinifera L.) Muscat of Alexandria and Black Monukka cultivars as genetic resource. African Journal of Basic and Applied Sciences. 2013;5(2):55-63. DOI: 10.5829/idosi.ajbas.2013.5.2.23313

30. Ильницкая Е.Т., Макаркина М. В. Применение ДНК-маркеров в современных селекционно-генетических исследованиях винограда. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2016;20(4):528-536. DOI: 10.18699/VJ16.163

31. Международный кодекс номенклатуры культурных растений. Преамбула. Часть I: Принципы: [перевод с английского языка]. Vavilovia. 2021a;4(1):55-59. DOI: 10.30901/2658-3860-2021-1-55-59

32. Международный кодекс номенклатуры культурных растений. Преамбула. Часть I: Принципы / перевод с английского И.Г. Чухина, С.Р. Мифтахова, В.И. Дорофеев. Пер. изд.: «International Code of Nomenclature for Cultivated Plants. Ed. 9. Scripta Horticulturae. 2016;18:I-XVII+1-190». Vavilovia. 2021b;4(1):55-59. DOI: 10.30901/2658-3860-2021-1-55-59

33. Международный кодекс номенклатуры культурных растений. Часть II: Главы I, II / перевод с английского И.Г. Чухина, С.Р. Мифтахова, В.И. Дорофеев. Пер. изд.: «International Code of Nomenclature for Cultivated Plants. Ed. 9. Scripta Horticulturae. 2016;18:I-XVII+1-190». Vavilovia. 2021c;4(2):44-57. DOI: 10.30901/2658-3860-2021-2-44-57

34. Международный кодекс номенклатуры культурных растений. Часть II: Главы III–V / перевод с английского И.Г. Чухина, С.Р. Мифтахова, В.И. Дорофеев. Пер. изд.: «International Code of Nomenclature for Cultivated Plants. Ed. 9. Scripta Horticulturae. 2016;18:I-XVII+1-190». Vavilovia. 2021d;4(3):40-57. DOI: 10.30901/2658-3860-2021-3-40-57

35. Международный кодекс номенклатуры культурных растений. Часть II: Главы VI–IX / перевод с английского И.Г. Чухина, С.Р. Мифтахова, В.И. Дорофеев. Пер. изд.: «International Code of Nomenclature for Cultivated Plants. Ed. 9. Scripta Horticulturae. 2016;18:I-XVII+1-190». Vavilovia. 2021e;4(4):38-54. DOI: 10.30901/2658-3860-2021-4-38-54

36. Международный кодекс номенклатуры культурных растений. Часть III–VI, Приложение I–IX / перевод с английского И.Г. Чухина, С.Р. Мифтахова, В.И. Дорофеев. Пер. изд.: «International Code of Nomenclature for Cultivated Plants. Ed. 9. Scripta Horticulturae. 2016;18:I-XVII+1-190». Vavilovia. 2022;5(1):41-70. DOI: 10.30901/2658-3860-2022-1-41-70

37. Jenderek M.M., Reed B.M. Cryopreserved storage of clonal germplasm in the USDA National Plant Germplasm System. In Vitro Cellular and Developmental Biology. 2017;53(4):299-308. DOI: 10.1007/s11627-017-9828-3

38. Keller E.R.J., Grübe M., Hajirezaei M.R., Melzer M., Mock H.P., Rolletschek H. et al. Experience in large-scale cryopreservation and links to applied research for safe storage of plant germplasm. Acta Horticulturae. 2016;1113:239-250. DOI: 10.17660/ActaHortic.2016.1113.36

39. Хлесткина Е.К., Гавриленко Т.А. Вступительная статья. Биотехнология и селекция растений. 2020;3(3):4-5.

40. Хватыш Г.А.; Фогель А.И., Бокарева Л.И. Сухумская ордена Трудового Красного знамени опытная станция субтропических культур ВНИИРа им. Н.И. Вавилова. Сухуми: Алашара; 1985.

41. Kim H.H., Popova E., Shin D.J., Yi J.Y., Kim C.H., Yoon M.K. et al. Cryobanking of Korean Allium germplasm collections: results from a 10 year experience. CryoLetters. 2012;33(1):45-57.

42. Кислин Е.Н., Носульчак В.А., Дзюбенко Н.И. Ампелографическая коллекция ВИР им. Н.И. Вавилова. Прошлое, настоящее и будущее. Магарач. Виноградарство и виноделие. 2015;(3):14-16.

43. Коваленко Т.В., Тихонова Н.Г., Хлесткина Е.К., Ухатова Ю.В. Регенерация винограда в культуре in vitro. Биотехнология и селекция растений. 2022;5(4):39-54. DOI: 10.30901/2658-6266-2022-4-o1

44. Křižan B., Ondrušiková E., Holleinová V., Moravcová K., Bláhová L. Elimination of Grapevine fanleaf virus in grapevine by in vivo and in vitro thermotherapy. Horticultural Science. 2009;36(3):105-108. DOI: 10.17221/37/2008-HORTSCI

45. Kulus D., Zalewska M. Cryopreservation as a tool used in long-term storage of ornamental species – A review. Scientia Horticulturae. 2014;168:88-107. DOI: 10.1016/j.scienta.2014.01.014

46. Lin H., Leng H., Guo Y., Kondo S., Zhao Y., Shi G. et al. QTLs and candidate genes for downy mildew resistance conferred by interspecific grape (V. vinifera L. × V. amurensis Rupr.) crossing. Scientia Horticulturae. 2019;244:200-207. DOI: 10.1016/j.scienta.2018.09.045

47. Maia J.D.G., Camargo U.A., Tonietto J., Zanus M.C., Quecini V., Ferreira M.E. et al. Grapevine breeding programs in Brazil. In: A. Reynolds (ed.). Grapevine Breeding Programs for the Wine Industry. Cambridge: Elsevier; 2015. p.247-271. DOI: 10.1016/B978-1-78242-075-0.00011-9

48. Malik S., Chaudhury R. Cryopreservation techniques for conservation of tropical horticultural species using various explants. In: P.E. Rajasekharan, V. Ramanatha Rao (eds). Conservation and Utilization of Horticultural Genetic Resources. Singapore: Springer; 2019. p.579-594. DOI: 10.1007/978-981-13-3669-0_19

49. Maliogka V.I., Skiada F.G., Eleftheriou E.P., Katis N.I. Elimination of a new ampelovirus (GLRaV-Pr) and Grapevine rupestris stem pitting associated virus (GRSPaV) from two Vitis vinifera cultivars combining in vitro thermotherapy with shoot tip culture Scientia Horticulturae. 2009;123(2):280-282. DOI: 10.1016/j.scienta.2009.08.016

50. Malnoy M., Viola R., Jung M.H., Koo O.J., Kim S., Kim J.S. et al. DNA-Free genetically edited grapevine and apple protoplast using CRISPR/Cas9 ribonucleoproteins. Frontiers in Plant Science. 2016;7:1904. DOI: 10.3389/fpls.2016.01904

51. Маркович В.В. Краткий свод работ Сухумской сельскохозяйственной и садовой опытной станции за пятнадцать лет (1894–1909 г.) ее существования. Известия Сухумской садовой и сельскохозяйственной опытной станции. 1911;(3):7-9.

52. Цифровой гербарий МГУ. Национальный банк-депозитарий живых систем «Ноев Ковчег»: [сайт]. URL: https://plant.depo.msu.ru [дата обращения: 22.06.2023].

53. Muséum national d’Histoire naturelle: [website]. Available from: https://science.mnhn.fr [accessed June 22, 2023].

54. Всероссийский институт генетических ресурсов растений им. Н.И. Вавилова. Научно-исследовательский отчет 2021. Номер отчета: б/н; 2021.

55. Негруль А.М. Ампелография. Москва: Пищепромиздат; 1946.

56. Негруль А.М. Ампелография с основами виноградарства. Москва: Рипол Классик; 1979.

57. Носульчак В.А. Виноград в научных трудах академика Н.И. Вавилова. Краснодар; 2013.

58. Nuzzo F., Gambino G., Perrone I. Unlocking grapevine in vitro regeneration: Issues and perspectives for genetic improvement and functional genomic studies. Plant Physiology and Biochemistry. 2022;193:99-109. DOI: 10.1016/j.plaphy.2022.10.027

59. NYBG Steere Herbarium: [website]. Available from: https://sweetgum.nybg.org [accessed June 22, 2023].

60. Olivares F., Loyola R., Olmedo B., de Los Ángeles Miccono M., Aguirre C., Vergara R. et al. CRISPR/Cas9 targeted editing of genes associated with fungal suscep tibility in Vitis vinifera L. cv. Thompson Seedless using geminivirus-derived replicons. Frontiers in Plant Science. 2021;12:791030. DOI: 10.3389/fpls.2021.791030

61. Panattoni A., D’Anna F., Cristani C., Triolo E. Grapevine vitivirus A eradication in Vitis vinifera explants by antiviral drugs and thermotherapy. Journal of Virological Methods. 2007;146(1-2):129-135. DOI: 10.1016/j.jviromet.2007.06.008

62. Panattoni A., Triolo E. New advances on in vitro antiviral chemotherapy. Journal of Plant Pathology. 2007;89(3):S51.

63. Panis B. Sixty years of plant cryopreservation: from freezing hardy mulberry twigs to establishing reference crop collections for future generations. Acta Horticulturae. 2019;1234:1-8. DOI: 10.17660/ActaHortic.2019.1234.1

64. Panis B., Nagel M., Van den Houwe I. Challenges and prospects for the conservation of crop genetic resources in field genebanks, in in vitro collections and/or in liquid nitrogen. Plants. 2020;9(12):1634. DOI: 10.3390/plants9121634

65. Pathirana R., McLachlan A., Hedderley D., Panis B., Carimi F. Pre-treatment with salicylic acid improves plant regeneration after cryopreservation of grapevine (Vitis spp.) by droplet vitrification. Acta Physiologiae Plantarum. 2015;38(12):11. DOI: 10.1007/s11738-015-2026-1

66. Pilatti F.K., Aguiar T., Simões T., Benson E.E., Viana A.M. In vitro and cryogenic preservation of plant biodiversity in Brazil. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 2011;47(1):82-98. DOI: 10.1007/s11627-010-9302-y

67. Pospisilova D. Variety – the building stone of the vinegrowing. In: Interactive Ampelography and Grapevine Breeding: Сollected Papers of the International Symposium; 20–22 September 2011. Krasnodar; 2012. p.238-252.

68. Prins B., Volk G.M., Preece J.E. Grape collection. In: G.M. Volk, J.E. Preece (eds). Field Tour of the USDA National Clonal Germplasm Repository for Tree Fruit, Nut Crops, and Grapes in Davis, California. Fort Collins, CO: Colorado State University; 2021. Available from: https://colostate.pressbooks.pub/davisrepositoryfieldtour/chapter/grapes [accessed June 22, 2023].

69. Пугачев И.И., Джаббаров Х.Д. САСВНИИР 50 лет. Бюллетень Всесоюзного научно-исследовательского института растениеводства им. Н.И. Вавилова. 1974;(46):9-18.

70. Рябова Н.И., Кошелев П.П. Негруль Александр Михайлович. В кн.: Соратники Николая Ивановича Вавилова: исследователи генофонда растений (юбилейное издание). 2-е изд. СанктПетербург: ВИР; 2017. С.374-378.

71. Савин Г.А. Генофонд винограда. Садоводство, виноградарство и виноделие Молдавии. 1990;(8):7-8.

72. Schwander F., Eibach R., Fechter I., Hausmann L., Zyprian E., Töpfer R. Rpv10: a new locus from the Asian Vitis gene pool for pyramiding downy mildew resistance loci in grapevine. Theoretical and Applied Genetics. 2012;124(1):163-176. DOI: 10.1007/s00122-011-1695-4

73. Scintilla S., Salvagnin U., Giacomelli L., Zeilmaker T., Malnoy M.A., van der Voort J.R. et al. Regeneration of plants from DNA-free edited grapevine protoplasts. bioRxiv. The Preprint Server for Biology. [preprint] 2021. DOI: 10.1101/2021.07.16.452503

74. Skiada F., Grigoriadou K., Maliogka V., Katis N.I., Eleftheriou E. Elimination of grapevine leafroll-associated virus 1 and grapevine rupestris pitting-associated virus from grapevine cv. Agiorgitiko and a micropropagation of protocol for mass production of virus-free plantlets. Journal of Plant Pathology. 2009;91(1):177-184. DOI: 10.4454/jpp.v91i1.639

75. Смирнов К.В., Калмыкова Т.И., Морозова Г.С. Виноградарство. Москва: Агропромиздат; 1987.

76. Smithsonian Institution. National Museum of Natural History. Search the Department of Botany Collections: [website]. Available from: https://collections.nmnh.si.edu/search/botany [accessed June 22, 2023].

77. Song S., Fu P., Lu J. Downy mildew resistant QTLs in Vitis amurensis “Shuang Hong” grapevine. In: Abstract Book GBG 2018. XII International Conference on Grapevine Breeding and Genetics. Bordeaux; 2018. p.131.

78. Staudt G., Kassemeyer H.H. Evaluation of downy mildew resistance in various accessions of wild Vitis species. VITIS – Journal of Grapevine Research. 1995;34(4):225-228. DOI: 10.5073/vitis.1995.34.225-228

79. Сухумская опытная станция. Отчет о научно исследовательской работе Сухумской опытной станции за 1964 год. Номер отчета: б/н; 1964. Центральный государственный архив научно-технической документации Санкт-Петербурга (ЦГАНТД СПб). Ф. Р-318. Оп. 23. Д. 510.

80. Sunitha S., Rock C.D. CRISPR/Cas9-mediated targeted mutagenesis of TAS4 and MYBA7 loci in grapevine rootstock 101- 14. Transgenic Research. 2020;29(3):355-367. DOI: 10.1007/s11248-020-00196-w

81. Swedish Museum of Natural History. Herbarium Catalogue (S): [website]. Available from: https://herbarium.nrm.se [accessed June 22, 2023].

82. Талаш А.И., Трошин Л.П. Современное фитосанитарное состояние виноградников России. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2012;(80):324-333.

83. Tropicos.org. Missouri Botanical Garden: [website]. Available from: https://tropicos.org [accessed June 22, 2023].

84. Ukhatova Y.V., Dunaeva S.E., Antonova O.Y., Apalikova O.V., Pozdniakova K.S., Novikova L.Y. et al. Cryopreservation of red raspberry cultivars from the VIR in vitro collection using a modified droplet vitrification method. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 2017;53(7):394-401. DOI: 10.1007/s11627-017-9860-3

85. Ухатова Ю.В. Совершенствование методов криоконсервации и оздоровления от вирусных болезней образцов вегетативно размножаемых культур: дис. … канд. биол. наук. Санкт-Петербург: ВИР; 2017. URL: http://vir.nw.ru/desert/yhatova/diss_ukhatova.pdf [дата обращения: 06.09.2023].

86. Úrbez-Torres J.R., Peduto F., Smith R.J., Gubler W.D. Phomopsis dieback: a grapevine trunk disease caused by Phomopsis viticola in California. Plant Disease. 2013;97(12):1571-1579. DOI: 10.1094/PDIS-11-12-1072-RE

87. Venuti S., Copetti D., Foria S., Falginella L., Hoffmann S., Bellin D. et al. Historical introgression of the downy mildew resistance gene Rpv12 from the Asian species Vitis amurensis into grapevine varieties. PLoS One. 2013;8(4):e61228. DOI: 10.1371/journal.pone.0061228

88. Вержук В.Г., Ерастенкова М.В., Хохленко А.А., Агаханов М.М., Кислин Е.Н., Ухатова Ю.В. Оценка регенерационной способности образцов винограда (Vitis vinifera L.) и красной смородины (Ribes rubrum L.) в культуре in vitro для создания криоколлекции ВИР. Магарач. Виноградарство и виноделие. 2022;24(3):214-218. DOI: 10.34919/IM.2022.24.3.003

89. Volk G.M., Shepherd A.N., Bonnart R. Successful cryopreservation of Vitis shoot tips: novel pre-treatment combinations applied to nine species. CryoLetters. 2019;39(5):322-330.

90. Vollmer R., Villagaray R., Cárdenas J., Castro M., Chávez O., Anglin N.L. et al. A large-scale viability assessment of the potato cryobank at the International Potato Center (CIP). In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 2017;53(4):309-317. DOI: 10.1007/s11627-0179846-1

91. Wan D.Y., Guo Y., Cheng Y., Hu Y., Xiao S., Wang Y. et al. CRISPR/Cas9-mediated mutagenesis of VvMLO3 results in enhanced resistance to powdery mildew in grapevine (Vitis vinifera). Horticulture Research. 2020;7:116. DOI: 10.1038/s41438-020-0339-8

92. Wan Y., Schwaninger H., He P., Wang Y. Comparison of resistance to powdery mildew and downy mildew in Chinese wild grapes. VITIS – Journal of Grapevine Research. 2007;46(3):132-136. DOI: 10.5073/VITIS.2007.46.132-136

93. Wang M.R., Chen L., Teixeira da Silva J.A., Volk G.M., Wang Q.C. Cryobiotechnology of apple (Malus spp.): development, progress and future prospects. Plant Cell Reports. 2018;37(5):689-709. DOI: 10.1007/s00299-018-2249-x

94. Wang X., Tu M., Wang D., Liu J., Li Y., Li Z. et al. CRISPR/ Cas9-mediated efficient targeted mutagenesis in grape in the first generation. Plant Biotechnology Journal. 2017;16(4):844-855. DOI: 10.1111/pbi.12832

95. Yang L., Guo Y., Hu Y., Wen Y. CRISPR/Cas9-mediated mutagenesis of VviEDR2 results in enhanced resistance to powdery mildew in grapevine (Vitis vinifera). Acta Horticulturae Sinica. 2020;47(4):623-634. DOI: 10.16420/j.issn.0513-353x.2019-0660