ПОЛИМОРФИЗМ НЕКОТОРЫХ ВИДОВ ТРИБЫ VICIEAE BRONN (FABACEAE LINDL.) ПО ДАННЫМ МОРФОЛОГИЧЕСКОГО И МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКОГО АНАЛИЗОВ

Проведены морфологический, кариологический и молекулярно-генетический анализы образцов Vicia unijuga A. Br. s. 1 (V. unijuga A. Br., V. ohwiana Hosok.) трибы Vicieae Bronn., собранных во время экспедиций на российском Дальнем Востоке, Сибири и Китае. По результатам факторного и дискриминантного анализов в качестве значимых морфологических признаков для классификации меж- и внутривидового разнообразия выделены длина цветоноса, длина листочка, форма прилистника, длина боба, число междоузлий на главном побеге. Установлено, что цитотипы 2n = 12, 24 у V. unijuga A. Br. и V. ohwiana Hosok. встречаются практически на всей территории их ареалов. 2n = 12 не является видоспецифичным признаком для V. ohwiana. По данным ITS-, SSR- и ISSR-маркирования выявлена значительная таксономическая близость V. unijuga и V. ohwiana с видами V. baicalensis (Turcz.) B. Fedtsch., V. ramuliflora (Maxim.) Ohwi, V. venosa (Willd. ex Link) Maksim. Комплекс видов V. unijuga s. 1 составляют генетически разнородную группу. Ряд популяций, локализованных на островах и побережье Японского моря, необходимо выделять в самостоятельные таксоны более высокого ранга.

Vicia baicalensis, Vicia ohwiana, Vicia ramuliflora, Vicia unijuga, Vicia venosa, морфологический анализ, карио-логический анализ, SSR, ISSR, ITSl-5.8S rRNA-ITS2, Vicia baicalensis, Vicia ohwiana, Vicia ramuliflora, Vicia unijuga, Vicia venosa, morphological analysis, karyological analysis, SSR, ISSR, ITS

1. Bojian B., Turland N. J. Vicia L. // Flora of China. St. Louis-Beijing, 2010, vol. 10, pp. 560-572

2. Гурзенков Н.Н., Павлова Н. С., Смирнова М. В. Кариотипы семи видов рода Vicia L. с Российского Дальнего Востока. // Биологические исследования на Горнотаежной станции. Сборник научных трудов. Уссурийск, 1995. Вып. 2. С. 139-149

3. Edward S. K., Thompson J. C. Simple and rapid method for the preparation of plant genomic DNA for PCR analysis // Nucleic Acids Res., 1991, vol. 19, p. 1349

4. Федченко Б. А. Вика // Флора СССР. T. XII. M.-Л., 1948. С. 406-475

5. Felsenstein J. Confidence limits on phylogenies: An approach using the bootstrap // Evolution, 1985, vol. 39, pp. 783-791

6. Han Y, Wang H. Y. Genetic diversity and phylogenetic relationships of two closely related northeast China Vicia species revealed with RAPD and ISSR markers. // Biochem Genet. 2010, vol. 48, no. 5-6, pp. 385-401. doi: 10.1007/s10528-009-9320-9

7. Krivenko D. A., Burlyaeva M. O. IAPT/IOPB chromosome data 22 / ed. K. Marhold // Taxon, 2016, vol. 65, no. 5, pp. 3, Е8-9. doi: http://dx.doi.org/10.12705/655.44

8. Kupicha F. C. The infrageneric structure of Vicia. / Notes Roy Bot Gard, Edinburgh, 1976, vol. 34, pp. 287-326

9. Mullis K., Faloona F., Scharf S., Saiki R., Horn G., Erlich H. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: The polymerase chain reaction // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol., 1986, vol. 51, pp. 263-273

10. Никифорова О. В. Дикорастущие вики Сибири. Новосибирск, 1988. 137 с

11. Пробатова Н. С.,Шатохина А. В.,Рудыка Э. Г. Числа хромосом некоторых двудольных флоры Амурской области // Ботан. Журн. 2005. Т. 90. № 5. С. 779-792

12. Репьев С.И., Станкевич А.К. Культурная флора. Вика. СПб, 1999. Т. IV Часть 2. 491 с

13. Ridgway K. P., Duck J. M., Young J. P. W. Identification of roots from grass swards using PCR-RFLP and FFLP of the plastid trnl (UAA) intron // BMC Ecology, 2003, vol. 3, pp. 8

14. Рыжова Н. Н., Бурляева М. О., Кочиева Е. З., Вишнякова М. А. Использование ITS последовательностей для оценки таксономических отношений у представителей трибы Vicieae (Adans.) Bronn сем. Fabaceae Lindl // Экологическая генетика. 2007. Т. V. №3. С. 5-14

15. Sanger F., Nicklen S., Coulson A. R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A., 1977, vol. 74, no. 12, pp. 5463-5467

16. Song J., Shi L., Li D., Sun Y., Niu Y. et all. Extensive Pyrosequencing Reveals Frequent Intra-Genomic Variations of Internal Transcribed Spacer Regions of Nuclear Ribosomal DNA // PLoS ONE, 2012, 7(8): e43971. doi: 10.1371/journal.pone.0043971

17. Tamura K., Peterson D., Peterson N. et all. MEGA5: Molecular Evolutionary Genetics Analysis using Maximum Likelihood, Evolutionary Distance and Maximum Parsimony Methods // Molecular Biology and Evolution, 2011, vol. 28, pp. 2731-2739

18. Yang T., Jiang J., Burlyaeva M., Hu J., Coyne C. J., Kumar S., Redden R., Sun X., Wang F., Chang J., Hao X., Guan J., Zong X. Large scale micro satellite development in grasspea (Lathyrus sativus L.), an orphan legume of the arid areas // BMC Plant Biol., 2014, 14:65. doi: 10.1186/1471-2229-14-65

19. Wang F., Yang T., Burlyaeva M. O., Li L., Jiang J., Fang L., Redden R., Zong X. Genetic Diversity of Grasspea and Its Relative Species Revealed by SSR Markers // PLoS ONE, 2015, 10(3): e0118542. doi:10.1371/journal. pone.0118542

20. White T. J., Bruns T., Lee S., Taylor J. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. / In: Innis M. A., Gelfand D. H., Sninsky J. J., White T. J., editors. PCR protocols: a Guide to methods and Applications. San Diego, Academic Press, 1990, pp. 315-322